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——22—附件3豆芽中植物生长调节剂的测定BJS2017031范围本方法规定了豆芽中11种植物生长调节剂的高效液相色谱-串联质谱测定方法。本方法适用于豆芽中6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸、赤霉素、吲哚乙酸、吲哚丁酸、2,4-二氯苯氧乙酸、4-氟苯氧乙酸、异戊烯腺嘌呤、氯吡脲、多效唑和噻苯隆的检测。2原理试样经含1%甲酸的乙腈溶液匀浆提取,脱水,离心后,上清液经分散固相萃取净化,用高效液相色谱-串联质谱测定,外标法定量。3试剂和材料除另有规定外,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T6682规定的一级水。3.1试剂3.1.1甲醇:色谱纯。3.1.2乙腈:色谱纯。3.1.3甲酸:色谱纯。3.1.4乙酸铵:色谱纯。3.1.5无水硫酸镁。3.1.6无水乙酸钠。3.1.7十八烷基键合硅胶吸附剂(C18):粒径范围为40μm—60μm。3.2试剂配制3.2.1含1%甲酸的乙腈溶液:量取10mL甲酸,加乙腈稀释至1000mL,混匀。3.2.2含0.1%甲酸的5mmol/L乙酸铵溶液:称取0.3854g乙酸铵,用水溶解并稀释至1000mL,加入1mL甲酸,混匀。3.3标准品6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸、赤霉素、吲哚乙酸、吲哚丁酸、2,4-二氯苯氧乙酸、4-氟苯氧乙酸、异戊烯腺嘌呤、氯吡脲、多效唑、噻苯隆标准品,纯度均≥90%。标准品的中文名称、英文名称、CAS登录号、分子式、相对分子质量详见附录A中的表A.1。—23——3.4标准溶液的配制3.4.1植物生长调节剂标准储备液(1mg/mL):精密称取6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸、赤霉素、吲哚乙酸、吲哚丁酸、2,4-二氯苯氧乙酸、4-氟苯氧乙酸、异戊烯腺嘌呤、氯吡脲、多效唑、噻苯隆标准品(3.3)各10mg,分别置于10mL容量瓶中,用甲醇溶解并稀释至刻度,摇匀,制成浓度各为1mg/mL标准贮备液,-20℃保存。3.4.2混合标准中间液A(10μg/mL):分别精密量取11种植物生长调节剂标准储备液(1mg/mL)(3.4.1)各1mL,置于同一100mL容量瓶中,用甲醇稀释至刻度,摇匀,制成浓度均为10μg/mL的混合标准中间液A。3.4.3混合标准中间液B(1μg/mL):精密量取混合标准中间液A(10μg/mL)(3.4.2)1mL,置于10mL容量瓶中,用甲醇稀释至刻度,摇匀,制成浓度均为1μg/mL的混合标准中间液B。3.4.4空白基质提取液:称取空白试样各10.0g(精确至0.01g),分别置于50mL具塞离心管中,自“加入20mL含1%甲酸的乙腈溶液”起与样品同法处理(6.1和6.2),作为空白基质提取液。3.4.5基质混合标准工作溶液:分别精密量取混合标准中间液B(1μg/mL)(3.4.3)0μL、10μL、20μL和40μL,及混合标准中间液A(10μg/mL)(3.4.2)10μL、15μL和20μL,用空白基质提取液(3.4.4)定容至1.0mL,作为基质混合标准工作溶液S0、S1—S6。浓度依次为0ng/mL、10ng/mL、20ng/mL、40ng/mL、100ng/mL、150ng/mL和200ng/mL,或依需要配制适当浓度的基质混合标准工作溶液。临用新制。4仪器和设备4.1高效液相色谱-串联质谱仪,配有电喷雾离子源(ESI源)。4.2涡旋混合器。4.3离心机:转速≥10000r/min。4.4电子天平:感量分别为0.01mg和0.01g。4.5氮吹浓缩仪。4.6高速匀浆机。4.7具塞离心管:50mL和15mL。4.8QuEChERS离心管:内含300mg无水硫酸镁和100mgC18。4.9微孔滤膜:孔径为0.22µm有机相型微孔滤膜。5试样制备与保存将豆芽切碎后用组织粉碎机充分粉碎混匀,均分成两份,作为试样和留样,分别装入洁净容器中,密封并标记,于-18℃保存。——24—6测定步骤6.1提取准确称取10.0g(精确至0.01g)试样置于50mL具塞离心管(4.7)中,加入20mL含1%甲酸的乙腈溶液(3.2.1),高速匀浆2min,加入4g无水硫酸镁(3.1.5)和1g无水乙酸钠(3.1.6),立即涡旋混合1min,以10000r/min离心5min使乙腈和水相分层。6.2净化精密量取上层乙腈溶液4mL置于QuEChERS离心管(含300mg无水硫酸镁和100mgC18)(4.8)中,涡旋混合2min,以14000r/min离心5min,移取全部上清液于15mL离心管(4.7)中,于45℃水浴中氮吹至近干,用甲醇定容至1mL,涡旋混匀1min,以14000r/min离心5min,上清液经0.22µm有机相滤膜(4.9)过滤后,取续滤液供高效液相色谱-串联质谱测定。6.3色谱测定6.3.1液相色谱-串联质谱检测6.3.1.1液相色谱条件a)色谱柱:C18柱,100mm×3.0mm,粒径2.7µm,或性能相当者。b)流动相:A为含0.1%甲酸的5mmol/L乙酸铵溶液(3.2.2),B为甲醇。梯度洗脱程序见表1。c)流速:300μL/min。d)柱温:35℃。e)进样量:5μL。表1梯度洗脱程序时间(min)流动相A(%)流动相B(%)Initial9553.009553.10901019.00208021.00208021.1095524.009556.3.1.2质谱条件a)离子源:电喷雾离子源(ESI源)。—25——b)检测方式:多反应监测(MRM)。c)扫描方式:6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸、赤霉素、2,4-二氯苯氧乙酸、4-氟苯氧乙酸、异戊烯腺嘌呤、氯吡脲、噻苯隆采用负离子模式扫描;吲哚乙酸、吲哚丁酸、多效唑采用正离子模式扫描。d)雾化气(GS1)、气帘气(CUR)、辅助气(GS2)、碰撞气(CAD)均为高纯氮气或其他合适气体,使用前应调节相应参数使质谱灵敏度达到检测要求,参考条件详见附录B。e)电喷雾电压(IS)、碰撞电压(CE)、去簇电压(DP)、碰撞室入口电压(EP)、碰撞室出口电压(CXP)等参数使用前应优化至最佳灵敏度,监测离子对和定量离子对等信息详见附录B中的表B.1和B.2。6.3.2标准工作曲线制作将基质混合标准工作溶液(3.4.5)按仪器参考条件(6.3.1)进行测定。以基质混合标准工作溶液的浓度为横坐标,以峰面积为纵坐标绘制标准工作曲线。6.3.3定性测定在相同试验条件下测定试样和基质混合标准工作溶液,记录试样和标准工作溶液中植物生长调节剂的色谱保留时间,以相对于最强离子丰度的百分比作为定性离子的相对离子丰度。若试样中检出与基质混合标准溶液(3.4.5)中植物生长调节剂保留时间一致的色谱峰,且其定性离子与浓度相当的标准溶液中相应的定性离子的相对丰度相比,偏差不超过表2规定的范围,则可以确定试样中检出相应植物生长调节剂。表2定性确证时相对离子丰度的最大允许偏差相对离子丰度(%)5020—5010—20≤10允许的相对偏差(%)±20±25±30±506.3.4定量测定若试样检出与基质混合标准工作溶液一致的植物生长调节剂,根据标准工作曲线按外标法以峰面积计算得到其含量。空白样品加标试样参考色谱图见附录C中的图C.1。6.4空白试验除不加试样外,均按试样同法操作。——26—7结果计算结果按式(1)计算:………………………………………….(1)式中:X—试样中各待测组分的含量,单位为微克每千克(μg/kg);c—从标准工作曲线中读出的供试品溶液中各待测组分的浓度,单位为纳克每毫升(ng/mL);V—试样溶液最终定容体积,单位为毫升(mL);f—试样制备过程中的稀释倍数,本方法中为5;m—称样量,单位为克(g)。计算结果以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示,结果保留三位有效数字。8检测方法的灵敏度、准确度、精密度8.1灵敏度本方法中6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸、赤霉素、吲哚乙酸、吲哚丁酸、2,4-二氯苯氧乙酸、4-氟苯氧乙酸、异戊烯腺嘌呤、氯吡脲、多效唑、噻苯隆检出限均为5µg/kg;定量限均为10µg/kg。8.2准确度本方法在10—100µg/kg添加浓度范围内,回收率为60%—120%。8.3精密度在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的20%。—27——AA附录A11种植物生长调节剂的化合物相关信息表A.111种化合物的中文名称、英文名称、CAS登录号、分子式、相对分子质量序号中文名称英文名称CAS登录号分子式相对分子质量1赤霉素Gibberellicacid77-06-5C19H22O6346.3726-苄基腺嘌呤6-Benzylaminopurine1214-39-7C12H11N5225.253吲哚乙酸Indole-3-aceticacid87-51-4C10H9NO2175.184噻苯隆Thidiazuron51707-55-2C9H8N4OS220.2552,4-二氯苯氧乙酸2,4-Dichlorophenoxyaceticacid94-75-7C8H6Cl2O3221.0464-氯苯氧乙酸4-Chlorophenoxyaceticacid122-88-3C8H7ClO3186.597氯吡脲Forchlorfenuron68157-60-8C12H10ClN3O247.688多效唑Paclobutrazol76738-62-0C15H20ClN3O293.799吲哚丁酸3-Indolebutyricacid133-32-4C12H13NO2203.24104-氟苯氧乙酸4-Fluorophenoxyaceticacid405-79-8C8H7FO3170.1411异戊烯腺嘌呤N6-(delta2-Isopentenyl)-adenine2365-40-4C10H13N5203.24——28—BB附录B参考质谱条件1)负离子模式扫描质谱条件a)离子源:电喷雾离子源(ESI源);b)检测方式:多反应监测(MRM);c)电喷雾电压(IS):-5500V(ESI-);d)气帘气(CUR):20L/min;e)雾化器(GS1):45L/min;f)辅助气压力(GS2):35L/min;g)离子源温度(TEM):500℃。表B.1负离子模式下8种植物生长调节剂定性、定量离子对和质谱分析参数序号分析物离子对m/z去簇电压V碰撞能量eV入口电压V出口电压V16-苄基腺嘌呤224.2/133.0*-77-31-4-6224.2/106.0-80-46-9-18224.2/117.0-76-47-9-182赤霉素344.9/142.5*-79-33-10-12344.9/238.9-78-22-8-14344.9/220.6-70-35-10-1432,4-二氯苯氧乙酸218.9/161.0*-18-16-9-26218.9/125.1-34-37-6-5218.9/89.1-21-49-12-1044-氯苯氧乙酸184.8/126.7*-43-22-6-9184.8/110.7-39-22-6-95噻苯隆218.9/99.9*-50-16-15-15218.9/70.7-51-45-15-10218.9/91.9-46-49-13-136氯吡脲245.9/126.6*-40-11-3-14245.9/90.9-40-37-3-147异戊烯腺嘌呤202.0/133.9*-58-23-10-10202.0/106.8-58-36-10-10202.0/157.9-70-31-10-1084-氟苯氧乙酸169.2/110.9*-53-16-10-22169.2/94.9-46-22-8-17*定量离子对。—29——2)正离子模式扫描质谱条件a)离子源:电喷雾离子源(ESI源);b)检测方式:多反应监测(MRM);c)电喷雾电压(IS):5500V(ESI+);d)气帘气(CUR):20L/min;e)雾化器(GS1):45L/min;f)辅助气压力(GS2):35L/min;g)离子源温度(TEM):500℃。表B.2正离子模式下3种植物生长调节剂定性、定量离子对和质谱分析参数序号
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